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羔羊大肠杆菌病的诊治

日期:2006-6-19 11:30:00  来源:不详 主题:羔羊大肠杆菌病的诊治

青海省某县羔羊发生一种以口鼻流沫、呼吸困难和胸膜肺炎为主要特征的疾病。根据发病情况、临床症状、剖检变化和实验室检验,确诊为大肠杆菌病。


 1  发病情况及临床症状  


发病羔羊52只,病羊多为1月龄左右羔羊,死亡28只,死亡率约54%,病程短,半小时到数小时。发病羔羊在病的初期体温升高达41.542℃,精神委顿,食欲不振,腹部胀气,继之出现呼吸困难,呈典型的腹式呼吸,口流白沫,鼻流黏液,步态不稳,喜卧,头向后仰或弯向一侧,最后在昏迷中死亡,未见有腹泻。曾肌肉注射青霉素、氨苄青霉素治疗,但效果不明显。  


剖检变化  


死亡羔羊胸腔、腹腔、心包均有积液。心内膜和心外膜出血。肺有纤维素性渗出,边缘有小部分发生实变。肝边缘出血。肾软化,肾表面及肾盂有出血点。肠道及真胃严重出血,黏膜易脱落,肠系膜淋巴结明显肿胀,切面多汁,且有出血。


 3  实验室诊断


3.1  镜检  无菌取死亡羔羊肝、脾、肺、肾及心包液做涂片,革兰氏染色镜检,发现一种革兰氏阴性、散在、两端钝圆的小杆菌。


3.2  细菌分离培养  无菌采取死亡羔羊的肺、肾、脾分别接种于鲜血琼脂平板和麦康凯琼脂平板,置大气和CO2中,37培养24 h48 h,得到灰白色、圆形、隆起、光滑、湿润、边缘整齐、大小约为13 mm不溶血的菌落和12 mm的红色菌落;涂片镜检两菌落均为革兰氏阴性小杆菌,与病料触片所观察到的细菌形态一致。


 3.3  动物实验  将大气和CO2中培养的菌落纯化后分别接种于营养肉汤,37培养24h,比浊测其浓度为2.0×1010/ml。取4只小鼠分为2组,每组2只。第1组每只腹腔注射大气中培养的菌落菌液1 ml,第2组每只腹腔注射CO2中培养的菌落菌液1 ml2 h后,两组小鼠出现呼吸困难;8 h后,两组小鼠全部死亡。对死亡小鼠进行剖检,发现肝、肺、脾、心均有出血点。取死亡小鼠的肺、肾、脾触片镜检,均见革兰氏阴性小杆菌。由此证明分离的两个菌落均具有致病性。 3.4  生化试验  两菌生化试验结果基本一致,均可发酵葡萄糖、麦芽糖、乳糖、蔗糖,产酸产气,三糖铁斜面和底部均变黄,产气但不产生H2SM.R.试验、靛基质试验、接触酶试验阳性,V-P试验、柠檬酸盐利用试验、氧化酶试验阴性,不分解尿素。


3.5  肠毒素试验  取死亡羔羊的回肠内容物5 ml,加10 ml生理盐水混匀,3 000 r/min离心20 min,过滤除菌,取滤液。将4只小鼠分为2组,每组2只。第1组为试验组,每只静脉注射滤液3 ml;第2组为对照组,每只静脉注射无菌生理盐水3 ml12 h后试验组和对照组均健活,说明肠内容物中不含致死性物质,羔羊不是被肠毒素致死。


3.6  药敏试验  用纸片扩散法进行。各药敏纸片的抑菌圈直径为:头孢曲松32.0 mm,头孢噻呋32.0 mm,丁胺卡那霉素30.0 mm,新霉素23.0 mm,庆大霉素14.0 m,青霉素无抑菌圈。


根据临床症状、剖检变化、实验室检验结果,诊断该场羔羊发生的疾病为大肠杆菌病。


 4  防治  


为防止疫情扩散,将病羊与健康羊隔离,同时对发病羊圈用20 ml/L NaOH热溶液进行喷洒消毒。根据药敏试验结果和实际情况,用卡那霉素对全群进行肌肉注射,剂量为常规用量,每日2次,连用5天。同时对严重病例静脉注射葡萄糖生理盐水和维生素C。通过采取以上措施,1周后再没有新病例出现,治疗期间病羊没有发生死亡。


 

 
 
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